(井冈山大学附属医院,全科医学科 江西吉安 343000)
摘要:目的:探究泛素结合酶-9对胃癌细胞凋亡的影响。方法:采用Ubc9基因的质粒对胃癌SGC7901细胞株进行瞬时转染,将实验对象分为:正常胃癌细胞A组(Normal组),脂质体B组(Lipo-2000组),空载质粒C组(NC-shRNA组),及目的质粒D组(Ubc9-shRNA组)。采用qRT-PCR检测各组mRNA水平,Western-blot检测各组Ubc9、α-SMA、Bcl-2蛋白表达结果,流式细胞仪检测各组细胞周期与凋亡结果。结果:1.与各组比较,Ubc9-shRNA组转染后细胞凋亡增加(P < 0.05);2.Ubc9-shRNA组能显著的抑制胃癌SGC7901中Ubc9基因的表达(P < 0.05);3.Ubc9-shRNA组明显抑制SGC7901细胞中Ubc9、α-SMA、Bcl-2蛋白表达(P < 0.05)。结论:Ubc9能抑制SGC7901细胞的增殖,诱导胃癌细胞凋亡。
关键词:胃癌;泛素结合酶-9;细胞凋亡
基金项目:江西省卫健委科技计划(SKJP220229855),吉安市科技计划项目(2022-026796)
作者简介:袁金华,男,主治医师,主要从事肿瘤临床诊疗工作。
胃癌是消化道常见的恶性肿瘤,根据全球癌症研究机构的数据统计,胃癌位于全球恶性肿瘤发病的第五位,死亡率位于第三位。我国是胃癌的高发区,发病率和死亡率分别占到全球的42.6%和45.0%[1],且发病呈年轻化趋势。当前胃癌治疗方法主要是手术、放疗和化疗,但预后较差,寻找有效的治疗手段对本病的治疗具有重要意义。研究表明:泛素结合酶9 (Ubc9) 是小泛素相关修饰物(SUMO)过程中唯一的结合酶,Ubc9在细胞增殖、有丝分裂、周期进程、分化等方面发挥着重要作用[2],Ubc9作为一个促癌基因,参与了肿瘤发生和进展的病理过程,抑制Ubc9基因,可能诱导胃癌细胞的凋亡。本研究针对Ubc9诱导胃癌SGC7901细胞凋亡的影响展开分析,为临床提供理论支持。
1材料与方法
1.1 主要实验材料
胃癌SGC7901细胞株(上海赛默生物有限公司),兔抗Ubc9单克隆抗体、兔抗p65单克隆抗体、兔抗IKBα单克隆抗体、兔抗Bcl-2单克隆抗体、山羊抗小鼠β-actin(美国 Abcam 公司),Trizol Reagent(Invitrogen公司),胎牛血清(上海碧云天生物技术有限公司),RPIM-1640培养基(Hyclone公司),Ubc9引物(Generay Biotech公司)。
1.2细胞培养转染
SGC79013细胞复苏后培养于含10%胎牛血清的RPIM-1640培养基中,于5%CO2、37℃培养箱中传代培养,每3~4 d按照1∶3比例传代1次,取对数生长期细胞进行相关实验。按5×104/ml的细胞密度接种至六孔板中后放入恒温培养箱中继续培养。将实验细胞分为四组:正常胃癌细胞A组(Normal组),脂质体B组(Lipo-2000组),空载质粒C组(NC-shRNA组),及目的质粒D组(Ubc9-shRNA组)。
细胞转染:准备5个1.5m1的EP管,分别向每管内加入0. 5ml Opti-DMEM,其中2个EP管做好标记分别加入l0ug空载质粒及目的质粒,余3管加入20ul的lipo2000,混合后静置。接着向加入lipo2000的3个EP管分别加入目的质粒、空载质粒以及500ul Opti-DMEM,混匀,最后将配置好的各EP管内液体分别加入所对应的培养皿中,置入培养箱中培养。
1.3 qRT-PCR检测基因表达
细胞转染48h后,使用RNA提取试剂盒提取细胞总RNA,并反转录得到cDNA,以此为模板进行qRT-PCR目的基因扩增,结果计算根据LC 480检测得出的CT值为cDNA荧光强度达到所设定阂值的循环数,ΔCt=目的基因CT值-内参基因CT值,每个样品中mRNA相对表达量=2-ΔCT× 100%。
1.4 Western-blot检测蛋白表达
采用蛋白提取试剂盒提取细胞总蛋白,BCA法测定总蛋白浓度,
上样SDS-PAGE胶,电泳,转膜、封闭,抗体孵育,显影成相,利用凝胶图像处理系统分析目标条带灰度值,记录其相对表达量。
1.5流式细胞仪检测细胞周期与凋亡
细胞周期检测:调整细胞浓度为1×106个/ml,离心,重悬后收集细胞,采用1ml已配制好的周期试剂检测各组细胞的周期,按照试剂盒说明书进行反应后,30 min内进行流式细胞仪检测细胞的周期。
2实验结果
2.1各组Ubc9基因mRNA的表达水平
与各组比较,D组能显著的抑制胃癌SGC7901中Ubc9基因的表达(P < 0.05)表1。
表1各组Ubc9基因mRNA表达水平
组别 | A | B | C | D |
Ubc9 | 0.76±0.06 | 0.75±0.08 | 0.78±0.06 | 0.31±0.06 |
2.2 各组Ubc9与α-SMA,Bcl-2蛋白表达水平
与各组相比,D组明显抑制了SGC7901中Ubc9,α-SMA,Bcl-2蛋白的表达,差异具有统计学意义(P < 0.05)表2。
表2 各组蛋白表达水平
组别 | A | B | C | D |
Ubc9 | 0.62±0.02 | 0.63±0.01 | 0.67±0.01 | 0.28±0.01 |
α-SMA | 0.77±0.03 | 0.78±0.05 | 0.81±0.2 | 0.24±0.02 |
Bcl-2 | 0.87±0.04 | 0.70±0.02 | 0.74±0.01 | 0.58±0.01 |
2.3细胞周期结果
转染后胃癌SGC7901细胞的周期被阻滞在G2/M期,并且能够促进SGC7901的凋亡,与各对照组相比差异具有统计学意义(P < 0.05)表3。
表3各组细胞周期结果
组别 | G1(%) | S(%) | G2(%) |
A | 52.7±2.4 | 38.9±2.0 | 8.2±1.9 |
B | 55.8±2.5 | 37.0±1.2 | 7.1±1.1 |
C | 52.1±1.1 | 39.9±1.2 | 7.9±1.2 |
D | 45.2±1.8 | 34.3±1.4 | 20.4±2.2 |
2.4细胞凋亡结果
D组转染后SGC7901细胞的凋亡增加明显,与各对照组相比差异具有统计学意义(P < 0.05)表4。
表4各组细胞凋亡结果
组别 | 凋亡率(%) |
A | 11.3±0.3 |
B | 11.0±0.4 |
C | 11.2±0.5 |
D | 29.7±0.4 |
3讨论
胃癌是临床上最常见的消化道恶性肿瘤,发病率呈逐年上升趋势,大多数患者就诊时已进入中晚期,临床治疗效果不佳,诱导肿瘤细胞凋亡是抗癌药物治疗肿瘤的重要机制之一。研究表明:泛素样小分子修饰SUMO参与了多种细胞进程,如细胞周期的调控、细胞增殖、细胞凋亡及DNA损伤修复等[3]。
细胞凋亡一种程序性的细胞死亡,Bcl-2基因主要的生理功能是减少细胞凋亡,研究发现Bcl-2基因在多种恶性肿瘤组织中高表达[4]。研究证实凋亡是由于caspases家族蛋白的瀑布式反应而导致的细胞自身溶解的过程,Bcl-2蛋白不仅能抑制细胞凋亡,亦可能拮抗抑癌基因所介导的细胞凋亡[5]。作为抗凋亡蛋白,Bcl-2蛋白能够通过抑制肿瘤凋亡来促进其扩散。转录激活后入核的NF-κB可调控下游凋亡相关基因Bcl-2、Bax及细胞增殖相关基因Cyclin D1的转录,从而发挥对细胞增殖、分化、凋亡及细胞周期的调控[6]。在本次实验中,我们观察发现Ubc9转染后胃癌SGC7901细胞的周期被阻滞在G2/M期,并且细胞的凋亡增加明显,Bcl-2水平降低,与各对照组相比,差异具有统计学意义(P < 0.05),提示Ubc9可能是通过影响Bcl-2基因的表达来调控胃癌SGC7901细胞的凋亡,Mo等[7]下调Ubc9后乳腺癌MCF-7细胞生长受抑制,凋亡增加,Ubc9是通过Bcl-2发挥作用,结果表明Ubc9通过影响Bcl-2基因表达而具有抗凋亡作用。
综上所述,人工合成的针对Ubc9基因的miRNA质粒能够抑制SGC7901细胞的增殖及促进其凋亡,对胃癌的治疗具有一定的潜在作用,为胃癌的治疗提供了一种新的实验依据。
参考文献
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